??Western Blot實驗可以說是生物專業最基礎的實驗了，然而，雖然WB實驗天天做，但是正常高清的結果圖并不是你想有就能有。

??WB實驗出現最多問題的，應該就是各種背景問題了。

??你想一下，好不容易實驗過五關斬六將做到最后一步，掃描結果出了，是這樣的：

??這真的是讓人非常郁悶了。

??為什么明明跑出了想要的趨勢，但就是背景臟?怎么讓自己的條帶不因臟臟的背景而毀了呢?

??這里要清楚一點，背景臟不一定是因為儀器不干凈造成的，也有可能是蛋白降解或者整個實驗過程中條件不合適造成的，有可能是以下的環節出了問題：

??1、實驗準備

??提取蛋白所需的研磨器材，以及制膠的玻璃板、梳子要清洗干凈;

??若長期不使用，建議器材在實驗前再行清洗一次以杜絕相應的污染。

??2、提取蛋白

??選擇合適的蛋白裂解液，充分去除一些干擾因素，比如核酸，多糖，脂類等;

??建議蛋白在測量濃度后變性分裝保存，避免反復凍融使蛋白發生降解;

??注意Loading buffer在保質期內，蛋白加入Loading buffer后充分混勻，再煮沸變性。

??3、制膠

??玻璃板夾緊之后，有些人習慣性加水試一下是否漏膠，建議用蒸餾水而不是自來水測試，測試結束后要將玻璃板之間的水倒干凈，用濾紙吸干殘留的水;

??灌膠之前要將配好的試劑充分混勻，灌膠的過程中要掌握好速度，緩慢加入，避免產生氣泡；

??灌注好分離膠后，緩緩加入無水乙醇封膠，該步操作時速度一定要慢，防止膠面被沖變形;在等待分離膠凝固的過程中，不要總去搖晃觀察；

??溫度較高的情況下，30min左右就會凝固，冬天氣溫較低可能需要較長時間；

??若分離膠液面不平，會影響后期蛋白電泳的效果。

??4、轉膜

??轉膜前需在轉膜板兩側各放置3-4張濾紙(兩側數量相同)；

??切記不要用手直接接觸PVDF膜和濾紙，手上的油脂會對其造成污染，務必佩戴干凈的手套，全程盡量使用鑷子夾取；

??轉膜過程中海綿-濾紙-凝膠-PVDF膜-濾紙-海綿每一層的氣泡要排空；

??轉膜時要使整個電轉儀置于冰水混合物中，常用220V或者其他高電壓進行；

??機器溫度升高，會使蛋白降解，也就是轉膜后，用麗春紅染色發現條帶跑糊，發光后條帶和背景也會臟的一塌糊涂。

??5、孵育抗體

??孵育一抗的時間大多會選擇4℃過夜，也可以室溫封閉2小時，4℃過夜效果會比室溫好，4℃過夜具體多長時間算合適，其實沒有硬性規定；

??二抗孵育的時間不宜過長，一般是室溫下搖床孵育1~2小時，抗體孵育完成后要清洗干凈，特別是二抗孵育完成后，否則可能導致顯影結果出現高背景。

??6、發光液配置

??大部分實驗室使用的ECL發光液，A液和B液按照1：1的比例配置；

??發光液要求現用現配，每次根據使用量合理配置用液量；

??發光液配置時間過長同樣會引起發光效果不好，背景臟或者漆黑一片。